Dr. David Garfield erforscht, wie regulatorische DNA-Elemente die Genexpression während der Entwicklung steuern und wie Mutationen in diesen Elementen zu neuen Körperformen oder Erkrankungen führen. Er nutzt dabei genomische Analysen und Single-Cell-Technologien, um die evolutionären Veränderungen von Genregulationsnetzwerken in Meeresorganismen (Seeigel) zu verstehen. Seine Arbeiten helfen, vorherzusagen, welche genetischen Varianten in nicht-kodierenden Regionen tatsächlich den Phänotyp beeinflussen — ein Problem, das bislang schwer zu lösen war. Die Erkenntnisse sind relevant für die Grundlagenforschung in Entwicklungsbiologie und Evolutionsgenetik sowie potenziell für das Verständnis von genetischen Erkrankungen beim Menschen.
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Dr. David Garfield
HU-FIS-Profil ↗Ziel des IGRK „Analyse und Umbau des regulatorischen Genoms“ ist es, die regulatorischen Prozesse und DNA-Sequenzen zu identifizieren und zu charakterisieren, die die Aktivität der Genexpression in Eukaryonten bestimmen. Dabei setzen die Forscher*innen in Berlin und Durham, North Carolina, experimentelle Hochdurchsatzmethoden ein, um die gewonnenen großen Datenmengen mit Methoden der Informatik zu analysieren.
In der Entwicklung befindliche Zelltypen entstehen durch präzise Genexpressionsmuster, die durch unterschiedliche Verwendung von DNA-Regulationselementen ausgelöst werden. Mutationen, die diese Elemente beeinflussen, oder Proteine, die sie binden, tragen wesentlich zur Erkrankung bei und sind der Entwicklung neuer Morphologien zugrunde gelegt. Um diese Elemente und deren Entwicklung besser zu verstehen, führt das Projekt eine Reihe von Einzelzell-RNA- und ATAC-Seq-Sequenzierungstechnologien im Modell des Seeigels ein, die A) gewebespezifische regulatorische Elemente und Expressionsprofile durch Abfragen einzelner Zellen identifizieren, B) ein genaues Ablesen ermöglichen Entwicklung von Reaktionen auf Mutationen und Störungen, einschließlich Neuspezifikation des Zellverhaltens, C) Entwicklung eines auf regulatorischen Informationen basierenden Homologiekonzepts, das zum Verständnis der Entwicklungsentwicklung verwendet wird. Das gut kommentierte Regulierungsnetzwerk für Seeigel, ein detailliertes Verständnis induktiver Wechselwirkungen in der frühen Entwicklung und eine aktive Evolutionsforschung machen den Seeigel zum bestens geeigneten Modell für diese Fragestellungen. Unter Verwendung von Einzelzellen-ATAC-Seq und einer neuen Methode zur Auflösung einzelzelliger, aufkommender RNA-Transkripte wird das Projekt einen detaillierten Atlas der Entwicklung von Seeigeln erstellen und anhand dieses Atlas herausfinden, wie sich regulatorische Landschaften während der Spezifikation verändern und wie sie sich zwischen nahe verwandten Arten entwickeln.
Developmental Cell · DOI
Proceedings of the National Academy of Sciences · DOI
Significance Otopetrins comprise a family of proton channels that are required for the development of calcified structures including otoliths and statoconia in vertebrates. To date, it remains unknown how otopetrins contribute to the calcification process. Using the sea urchin larva, we could demonstrate that the otopetrin ortholog otop2l encodes a proton channel that is essential for the formation of the CaCO 3 skeleton. otop2l is exclusively expressed by the calcifying primary mesenchyme cells, where it promotes the exit of protons liberated by the mineralization process. Given the deep phylogenetic origin of otopetrins in animals, our work identified a key mechanism in the mineralization process with relevance for many calcifying species and their responses to changes in environmental pH.
Genome Biology and Evolution ·
Bisher ist es schwierig vorherzusagen, welche Mutationen in nicht-kodierender regulatorischer DNA den Phänotyp am wahrscheinlichsten beeinflussen, da die Sequenzen der regulatorischen DNA-Elemente häufig degeneriert sind. In dieser Studie untersuchen wir die Aktivität der regulatorischen Elemente und die Genexpression während der Entwicklung in zwei verwandten Spezies im Vegleich. Indem wir die Beziehung zwischen Änderungen der DNA-Sequenz, der Aktivität der regulatorischen Elemente und der Expression untersuchen, bauen wir Vorhersagemodelle auf, welche Arten von Mutationen die Genexpression und Phänotypen höherer Ebenen am wahrscheinlichsten beeinflussen.
Ocean acidification (OA) is increasing due to anthropogenic CO2 emissions and poses a threat to marine species and communities worldwide. To better project the effects of acidification on organisms' health and persistence, an understanding is needed of the 1) mechanisms underlying developmental and physiological tolerance and 2) potential populations have for rapid evolutionary adaptation. This is especially challenging in nonmodel species where targeted assays of metabolism and stress physiology may not be available or economical for large-scale assessments of genetic constraints. We used mRNA sequencing and a quantitative genetics breeding design to study mechanisms underlying genetic variability and tolerance to decreased seawater pH (-0.4 pH units) in larvae of the sea urchin Strongylocentrotus droebachiensis. We used a gene ontology-based approach to integrate expression profiles into indirect measures of cellular and biochemical traits underlying variation in larval performance (i.e., growth rates). Molecular responses to OA were complex, involving changes to several functions such as growth rates, cell division, metabolism, and immune activities. Surprisingly, the magnitude of pH effects on molecular traits tended to be small relative to variation attributable to segregating functional genetic variation in this species. We discuss how the application of transcriptomics and quantitative genetics approaches across diverse species can enrich our understanding of the biological impacts of climate change.